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上海宝叶生物科技有限公司
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2013年
02月 -
方法步骤:1)前一天转形的培养皿,当菌落长至约0.5mm大小时,将培养皿移至4℃放置1h。2)准备一张无菌的硝化纤维滤膜,以铅笔在边缘标上组别?!羟氪魇痔缀笤倌萌÷四?!3)打开培养皿盖子,以两支扁平镊子将滤膜两边夹住,轻轻覆盖在菌落上方,尽可能避免有气泡产生?!糇⒁猓÷四じ哺巧先ズ缶筒灰僖贫?!4)等滤膜*湿透后,以针头在滤膜边缘戳洞做记号(至少做三个记号)。小心把滤膜掀起,菌落朝上放置在LB/Amp/IPTGplate上。盖上盖子,在37℃培养2~4h,以诱导启动T5promoter,表现其下【查看全文】
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19
2013年
02月 -
Histochemical detection重组质体的检定
仪器用具:平端镊子药品试剂:Nitrocellulose滤膜LB/Amp/IPTG/X-Glucplate(LBplate添加100μg/mLampicillin,0.2MIPTG,50μg/mLX-Gluc)方法步骤:1)前一天进行转形的培养皿,当菌落长至约0.5mm大小时,将培养皿移至4℃放置至少1h。2)准备一张无菌的硝化纤维滤膜,以铅笔在边缘标上组别?!羟氪魇痔缀笤倌萌÷四?!3)打开培养皿盖子,以两支扁平镊子将滤膜两边夹住,轻轻覆盖在菌落上方,尽可能避免有气泡产生。◆注意!滤膜覆盖上去后【查看全文】
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16
2013年
01月 -
方法步骤:1)吸取20μL的蛋白质样本,小心注入微量滴定盘中,避免气泡产生。2)每一样品槽加入200μL基质液,混合均匀;可用烧热的接种环去除气泡。3)静置约1~2min,颜色开始加深,然后加入30μL终止液。反应时间的长短,要以样本中的酶活性大小來做调整。因为我们只测定色析法各分划的相对酶活性,因此并不加终止液。4)以ELISA光度计测定波长415nm的吸光值。酶活性单位的测定:a.以上步骤,只可测定GUS活性的相对大小,对色析法所得到的各个分划进行侦测,相当方便,但并非酶活性单位的测定方法。【查看全文】
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16
2013年
01月 -
方法步骤:1)尿素洗过夜的转印纸再以10mLPBST洗三次,每次约10min,均在上述方形培养皿中进行。2)转印纸放在明胶NET溶液中反应,置室温中反应1h。一般使用方形培养皿当容器,但亦可装入塑料袋中反应,较节省试剂用量。3)反应后,以PBST浸洗二次。4)把转印纸放在抗体溶液中反应,置室温反应1h。5)反应后以PBST洗三次,改用酶联体反应,在室温下反应1h。6)以PBST洗四至五次,注意容器也要洗干净。7)加入DAB基质溶液约10mL呈色,尽量避光,并且不时摇动呈色液。8)数分钟内可呈色,【查看全文】
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14
2013年
01月 -
[方法]1.配制4个50ulPCR反应混合液,包含:●去离子水,35.5ul●20×dNTP(每种5mmol/L),2.5ul●10×Vent聚合酶缓冲液,5.0ul●LMB3引物(10pmol/ul),2.5ul●VL—NotI引物(10pmol/ul),2.5ul●scFV基因模板DNA(100ng),1ul●VentDNA聚合酶(2单位),1.0ul2.在有加热盖的热循环仪内,加热反应混合液到94℃5分钟。3.以94℃1分钟、42℃1分钟、72℃2分钟的条件共循环30次,扩增VL基因。4.【查看全文】
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14
2013年
01月 -
连接scFv和载体DNA并转化大肠杆菌,构建scFv突变文库
[方法]1.配制1个50ul连接混合液,包含:●10×连接缓冲液,5uI●水,16ul●NcoI和NotI消化的pHENl(100g/ul),20ul●VcoI和NotI消化的scFv文库(100g/ul),7ul●T4DNA连接酶(400U/ul),2ul2.16℃孵育反应液过夜。3.乙醇沉淀DNA并用70%乙醇洗涤沉淀1次。4.重悬DNA于10ul水中。5.用4份相同的2.5ul的DNA分别电转化到电感受态大肠杆菌TGl细胞中。6.确定文库容量,并将菌文库材抖储存于-70℃。www.shjs【查看全文】
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2013年
01月 -
[方法]1.每个克隆用lml2XTY/amp/S1u30~C培养过夜,250r/min振荡。2.取50u1过夜培养物,加入到含有5ml2XTY/amp/0.1%glu的50ml试管内;并在30℃培养大约2小时,250r/Illin振荡,吸光度(A600)大约0.9。3.每管加入2.5ullmol/LIPTG诱导scFv表达(终浓度为500umol/L),并在30℃培养4h,250r/min振荡。在1个15mlFalcon试管内4000g离心15分钟,收集细胞。4.准备外周质提取物。用200u1P【查看全文】
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2013年
01月 -
免疫组织化学(1HC)或称免疫细胞化学是一种方法学,根据特异性抗原—抗体反应的原理,检测组织或细胞内的抗原或抗体成分。IHC有一个很长的发展历史,已有半个世纪以上,自Coons创建免疫荧光组化技术以来,不断有人(或公司)推出更为敏感的方法,经过60多年的不断努力和发展,由zui初的免疫荧光直接标记法,逐步出现了间接法、免疫酶法、亲和细胞化学方法、免疫胶体金法,多聚物酶法(或称非生物素放大法)、CSA法、原位免疫PCR法及循环放大法等。目前提高免疫组化敏感性可通过如下几种途径来实现。(1)首先是增【查看全文】