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常用动物  大鼠，小鼠，性成熟，8-10周龄

适应性饲养后，用消毒棉拭子旋转插入小鼠阴道内，并在阴道内轻轻转动几下后取出，涂于载玻片上，用95%酒精固定30min后晾干。涂片进行HE染色或瑞士染色，观察动情周期。连续观察2周，每日定时进行阴道涂片检查，观察动情周期。选择连续有2个或2个以上正常动情周期（阴道涂片为大量无核角化细胞的大鼠），造模前一天每鼠肌注雌二醇0.1mg/(kg.d，大鼠)，使动物统一处于动情期。

捐赠鼠和接受鼠比例为1:2。

建模方法I

  大鼠：腹腔注射麻醉后，将大鼠固定于***上，腹部剪毛，消毒，并在无菌条件下开腹。在尿道口上约1cm处做垂直正中纵切口长约2-3cm进腹。大鼠子宫呈Y型，分离左侧子宫，近端离左子宫角1cm处结扎，远端离卵巢2cm处结扎，并结扎两端间的子宫系膜血管，切除长约1.5-2.0cm的子宫段，立即放入盛有生理盐水的培养皿中，修剪去子宫浆膜外的脂肪组织，纵向切开子宫腔，剥去浆膜层及肌层，将子宫内膜片剪成5mm×5mm大小，移植到腹壁血管丰富处，注意其内膜面与皮下组织贴合。逐层缝合伤口，待老鼠自然苏醒后常规饲养。术后每天注射****，共3天。

  建模4周后，开腹检查所有造模大鼠移植的子宫内膜是否生长。若见移植物体积增大，形成表面被覆结缔组织并有血管形成、内有液体积聚的透明小囊泡，则证明造模成功。

建模方法II

小鼠：动情期C57BL/6小鼠，脱颈椎法处死，仰卧位固定于***，腹部酒精消毒后，铺上无菌治疗洞巾，戴无菌手套，在耻骨联合上方0.5cm处，沿正中线剖开腹腔。找到Y形子宫，小心分别牵出左、右侧子宫，细心分离双侧子宫系膜。离断宫角与卵巢，在Y形子宫分叉分别剪断左侧及右侧子宫，放入装有10mL37℃生理盐水的无菌弯盘中，反复漂洗子宫表面的血迹，进一步分离剩余粘附的子宫系膜。将两个子宫角分别放置于两个无菌弯盘中，将它们直接剪成大小约1mm3的大小均等的碎片，并将它们悬浮于37℃生理盐水中。将捐赠鼠的子宫按1:2的比例接种于受鼠腹腔，用0.3mL生理盐水悬浮弯盘里的组织碎片。

随机取动情期C57BL/6小鼠，取脐下0.5cm偏正中线0.5cm处的左下腹为进针点，将溶有子宫组织碎片的0.3mL生理盐水用20号针头连同子宫组织快碎片注入接受鼠的腹腔，后放置于鼠笼。直至第9天。随机取动物，处死后，取异位内膜，进行冰冻切片制备，HE染色观察异位内膜病灶是否有典型的内膜腺体及间质，提示复制动物模型是否成功。