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　　样本采集与保存

　　采集：根据检测目的确定采样部位。若检测水稻种子，要确保种子无霉变、虫蛀，随机选取一定数量的种子，一般不少于 100 粒，以保证样本的代表性。对于水稻植株，可采集叶片，选取生长良好、无病虫害的叶片，用干净剪刀剪取适量，一般每份样本采集 1 - 2 克叶片。

　　保存：采集后的样本需及时处理。若不能立即处理，种子可置于干燥、阴凉处保存，避免受潮;叶片样本可放入自封袋中，排除空气后密封，放入冰箱冷藏(4℃左右)，保存时间不宜超过 3 天，以防核酸降解。

　　样本研磨

　　设备选择：可使用研钵和研杵手动研磨，也可选用组织研磨仪等电动设备。手动研磨适合少量样本，操作简单但效率较低;组织研磨仪能同时处理多个样本，效率高且研磨效果均匀。

　　操作步骤：将样本放入研钵或研磨仪的研磨管中，加入适量的液氮(液氮可使样本迅速冷冻，便于研磨)。若用手动研钵，用研杵快速研磨样本，直至呈粉末状;若用组织研磨仪，设置合适的研磨时间和频率，一般研磨时间为 1 - 3 分钟，频率为 20 - 30 次/秒，研磨完成后样本也应呈均匀粉末状。

　　核酸提取

　　试剂选择：常用的核酸提取试剂有 CTAB 法试剂盒、磁珠法试剂盒等。CTAB 法试剂盒成本较低，但操作步骤相对复杂;磁珠法试剂盒操作简便、快速，且提取的核酸纯度较高。

　　操作流程：以 CTAB 法为例，将研磨好的样本粉末转移至离心管中，加入 CTAB 提取液，65℃水浴 30 - 60 分钟，期间不时颠倒混匀。水浴后加入氯仿 - 异戊醇(24:1)，轻轻颠倒混匀，12000 rpm 离心 10 - 15 分钟。取上清液转移至新的离心管中，加入异丙醇，轻轻颠倒混匀，-20℃沉淀 30 分钟以上。12000 rpm 离心 10 分钟，弃上清，用 75%乙醇洗涤沉淀 2 次，晾干后加入适量的 TE 缓冲液溶解核酸。

　　核酸纯化与浓度测定

　　纯化：可使用乙醇沉淀、柱纯化等方法进一步纯化核酸。乙醇沉淀可去除残留的盐离子和小分子杂质;柱纯化则利用特定的吸附柱，能高效去除杂质，提高核酸的纯度。

　　浓度测定：使用紫外分光光度计测定核酸的浓度和纯度。一般核酸在 260 nm 处有最大吸收峰，通过测量 260 nm 和 280 nm 处的吸光度值，计算 A260/A280 的比值。比值在 1.8 - 2.0 之间说明核酸纯度较高，可用于后续检测。根据测定的浓度，将核酸稀释至合适的浓度，一般转基因水稻检测中核酸浓度控制在 10 - 100 ng/μL。