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大鼠神經(jīng)元細胞的分離和培養(yǎng)實驗
閱讀：573 發(fā)布時間：2018-12-13實驗材料 母鼠
試劑、試劑盒 BSS
儀器、耗材 無菌器械顯微鏡
實驗步驟
1. 殺死懷孕 18 天母鼠（常用過量 CO2 使其窒息），用無菌器械取出胚胎，放在無菌的培養(yǎng)皿中。
2. 取下胚胎的頭，放在盛有 4 ml 不含 Ca2+ 和 Mg2+ 的平衡鹽溶液（BSS）的培養(yǎng)皿中。
3. 從頭顱骨上取下腦，放在 35 mm 培養(yǎng)皿中的 BSS 液滴上，培養(yǎng)皿中半裝滿 Paraplast（Sigma）。
4. 在顯微鏡下剝離腦膜，取下海馬體，放在裝有 BSS 的 35 mm 培養(yǎng)皿中。
5. 海馬體在新鮮配制的 0.25% 胰酶 BSS 溶液中 37℃ 孵育 15 分鐘。
6. 小心吸掉胰酶溶液，加入 5 ml BSS，層流柜中室溫放置 5 分鐘。重復此步兩次或更多次，后加入 2 ml BSS。
7. 首先用普通巴斯德吸管分離細胞，然后換用一支用火燒平、內(nèi)徑縮小一半的吸管。
8. 計數(shù)細胞，確定細胞密度。
9. 所需數(shù)目的細胞懸浮于接種培養(yǎng)基中，接種培養(yǎng)皿中 poly-L-lysine 預處理的蓋玻片。如果用于生化實驗，細胞直接接種 poly-L-lysine 處理的培養(yǎng)皿。
10. 2~4 小時后，蓋玻片轉(zhuǎn)移至含有單層神經(jīng)膠質(zhì)的培養(yǎng)皿中，培養(yǎng)皿中是維持培養(yǎng)基。
11. 每周更換 3 ml 培養(yǎng)液。