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ATP 含量試劑盒說明書

時(shí)間:2016/5/3閱讀:2294
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ATP 含量試劑盒說明書

測定意義:

ATP 廣泛存在于動物、植物、微生物和培養(yǎng)細(xì)胞中,是生物能量通貨,能荷是描述細(xì)胞能量 代謝狀態(tài)的主要參數(shù)。測定 ATP 含量并且計(jì)算能荷,能夠反映能量代謝狀態(tài)。

測定原理:

ATP  254 nm 下有吸收峰,可以利用液相色譜法測定其含量。

需自備的實(shí)驗(yàn)用品:

液相色譜儀、低速離心機(jī)、溶劑抽濾裝置、針頭式過濾器水系,50 個(gè),0.22μm、濾 膜水系和有機(jī)系各 1 個(gè),0.45μmC18 柱4.6 ×150 mm、可調(diào)式移液器、樣品瓶50 個(gè)2mL、甲醇色譜級300 mL和蒸餾水。

試劑的組成和配制:

試劑一液體 60mL×1 瓶,4℃保存 

試劑二液體 60mL×1 瓶,4℃保存;

試劑三粉劑 1×1 瓶,粉劑 2×1 瓶4℃保存;臨用前用少量蒸餾水將粉劑 1 和粉劑 2 溶解 后倒入 1000mL 容量瓶中用蒸餾水定容至 1000mL,形成流動相緩沖液基質(zhì)試劑瓶 中的粉劑要沖洗干凈, 4℃可保存 1 周;

試劑四ATP 標(biāo)準(zhǔn)品 5mg×1 支,-20℃保存。臨用前加入 1mL 蒸餾水,配成 5mg/mL 溶液, 配好后-20℃可保存 1 周.

實(shí)驗(yàn)前的準(zhǔn)備工作:

1、將蒸餾水 1000 mL、流動相緩沖液基質(zhì) 1000 mL 和甲醇 300 mL  0.45 μm 的濾膜抽濾, 以除去溶劑中的雜質(zhì)防止堵塞色譜柱。蒸餾水和緩沖液基質(zhì)用水系濾膜抽濾,甲醇 用有機(jī)系濾膜抽濾。

2、流動相的配制將抽濾完畢的流動相緩沖液基質(zhì) 1000 mL 與甲醇配比為 99.90.1v/v), 即取 999mL 緩沖液基質(zhì)與 1mL 甲醇混合。

3、將抽濾完畢的甲醇和蒸餾水配比成 100%的甲醇 10%的甲醇,蒸餾水各 250 mL 2 和 3 中的溶劑超聲 30 分鐘,以脫去溶劑中的氣泡防止堵塞色譜柱。

ATP 的提取:

1、組織的處理準(zhǔn)確稱取組織重量 0.1g加入 1mL 試劑一,提取 ATP, 4000g 常溫離心 15 min,取上清液加入等體積的試劑二,混勻,4000 g 常溫離心 15 min,取上清,0.22μm 水系微孔濾膜過濾后冰上放置待測。

2、細(xì)胞處理收集約 30 mL 細(xì)胞離心菌體經(jīng)干燥后,加入 1 mL 試劑一,超聲破壁細(xì)胞(950 W,30%,15 min工作 1 s 間隔 2 s),4000 g 常溫離心 15 min,取上清液,加入等體積的 試劑二混勻,4000 g 常溫離心 15 min,取上清,0.22μm 水系微孔濾膜過濾后冰上放置 待測。

ATP 含量測定操作步驟:

  1. 開啟電腦、檢測器和泵,安裝上色譜柱打開 empower 軟件,在方法組中設(shè)置進(jìn)樣量 20 μL,流速 1 mL/min,保留時(shí)間 10min檢測波長 254nm,設(shè)置完畢保存方法組。 
  2. 100%的甲醇、10%的甲醇、蒸餾水按甲醇濃度從大到小的順序洗色譜柱 30min。 
  3. 用流動相洗柱子待基線穩(wěn)定后開始加樣。 
  4. 加入標(biāo)準(zhǔn)品 20 μL10min 內(nèi)可分離 ATP, ATP 的保留時(shí)間在 3min 左右,(柱子不同 保留時(shí)間有差異),計(jì)算不同濃度的 ATP 標(biāo)準(zhǔn)品的峰面積。 
  5. 加入樣品 20 μL,在相應(yīng)保留時(shí)間處檢測 ATP 的峰面積。

ATP 含量的計(jì)算:

5mg/ml  ATP 標(biāo)準(zhǔn)品用蒸餾水分別稀釋成 100 μg/ml80 μg/ml、60 μg /ml、40 μg /ml和20 μg /ml  ATP 標(biāo)準(zhǔn)品溶液,以標(biāo)準(zhǔn)品濃度μg/ml為橫坐標(biāo)峰面積為縱坐標(biāo)分別計(jì) ATP 標(biāo)準(zhǔn)曲線。

   來源于青島捷世康:www.jisskang。。com

標(biāo)準(zhǔn)品的稀釋倍數(shù)要根據(jù)樣品中 ATP 濃度確定,樣品中 ATP 的峰面積必須落在不同濃 度的 ATP 標(biāo)準(zhǔn)品的峰面積之內(nèi)該標(biāo)準(zhǔn)品稀釋倍數(shù)只是一個(gè)參考。

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